Том 35 №1

Содержание

1. ОММОХРОМЫ СЛОЖНОГО ГЛАЗА НАСЕКОМЫХ: АНТИГЛИКИРУЮЩЕЕ ДЕЙСТВИЕ
2. НЕЙРОНЫ TECTUM OPTICUM РЫБ, ЭЛЕКТРИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ И ПОДБОР АДЕКВАТНОЙ СТИМУЛЯЦИИ
3. ДАУНРЕГУЛЯЦИЯ УЛЬТРАФИОЛЕТ-ЧУВСТВИТЕЛЬНОГО ЗРИТЕЛЬНОГО ПИГМЕНТА ТАРАКАНА УМЕНЬШАЕТ ЭФФЕКТ МАСКИНГА ПРИ КОРОТКОВОЛНОВОМ ОСВЕЩЕНИИ
4. ЧАСТОТНО-ВРЕМЕННЫЕ ОСОБЕННОСТИ ДВИЖЕНИЯ ГЛАЗ ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ ВИДЕООКУЛОГРАФИЧЕСКОГО ИНТЕРФЕЙСА В ЗАДАЧАХ УПРАВЛЕНИЯ ЭРГАТИЧЕСКИМИ СИСТЕМАМИ
5. ПЕРСПЕКТИВЫ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ ДАННЫХ О ВИБРАЦИОННОЙ КОММУНИКАЦИИ ДЛЯ РАЗРАБОТКИ БЕЗОПАСНЫХ МЕТОДОВ КОНТРОЛЯ ЧИСЛЕННОСТИ НАСЕКОМЫХ
6. МЕТОД АНСАМБЛИРОВАНИЯ АЛГОРИТМОВ КЛАСТЕРИЗАЦИИ ДЛЯ РЕШЕНИЯ ЗАДАЧИ СОВМЕСТНОЙ КЛАСТЕРИЗАЦИИ
7. УЛУЧШЕНИЕ НЕЙРОСЕТЕВОГО ДЕТЕКТОРА ОТРЕЗКОВ ПУТЕМ ДОБАВЛЕНИЯ ИНЖЕНЕРНЫХ ПРИЗНАКОВ
8. РАСПОЗНАВАНИЕ ПРОЕКТИВНО ПРЕОБРАЗОВАННЫХ ПЛОСКИХ ФИГУР. XV. МЕТОДЫ ПОИСКА ОСЕЙ И ЦЕНТРОВ ОВАЛОВ С СИММЕТРИЯМИ, ИСПОЛЬЗУЮЩИЕ СЕТ ДУАЛЬНЫХ ПАР ЛИБО ТРИАДЫ ЧЕВИАН
9. АППАРАТНАЯ НЕЗАВИСИМОСТЬ И ТОЧНОСТЬ НЕЙРОСЕТЕВОГО ШУМОПОДАВЛЕНИЯ НА ИЗОБРАЖЕНИЯХ КАК ФУНКЦИЯ ОБЪЕМА ОБУЧАЮЩИХ ДАННЫХ

Оммохромы – экранирующие и антиоксидантные органеллы сл1жного глаза беспозвоночных животных выполняют функцию светофильтрации, светопоглощения и антиоксидантной защиты. В настоящей работе впервые обнаружено, что оммохромы in vitro проявляют антигликирующую активность. Оммохромы были получены из глаз насекомых трех различных семейств: Strationyidae, Sphingidae и Acrididae. Показано, что все изученные оммохромы ингибировали реакцию образования флуоресцирующих продуктов модификации сывороточного альбумина в присутствии высоких концентраций фруктозы (фруктозилирование). Оммохромы из глаз мухи “черная львинка” (Hermetia illucens) были наиболее эффективными ингибиторами процесса фруктозилирования. Оммохромы, окисленные пероксидом водорода, не проявляли ингибирующего действия в отношении процесса гликирования. Полученные результаты представляют интерес как для понимания биологической роли оммохромов у беспозвоночных животных, в частности, для выяснения их влияния на окислительную модификацию белков ретинулярных и пигментных клеток омматидия, так и для создания на их основе фармакологических препаратов для лечения и предотвращения патологий, связанных с развитием метаболического синдрома.

Ключевые слова: оммохромы, насекомые, гликирование, фруктозилирование

DOI: 10.31857/S0235009221010030

Список литературы:

• Грибакин Ф.Г., Чеснокова Е.Г. Использование глазных мутантов для исследования физиологии зрения насекомых. Успехи соврем. биологии. 1984. Т. 97. С. 69–82.
• Донцов А.Е., Зак П.П., Островский М.А., Воспельникова Н.Д. Антигликирующее действие мелатонина. Доклады РАН. 2017. Т. 475. № 5. С. 1–4.
• Донцов А.Е., Сакина Н.Л., Кузнецов Ю.В., Островский М.А. Антиоксидантные и антигликирующие свойства N-ацетилцистеината-6-гидрокси-2-амино-бензотиазола. Химическая физика. 2019. Т. 38. № 12. С. 54–58.
• Донцов А.Е., Сакина Н.Л., Яковлева М.А., Бастраков А.И., Бастракова И.Г., Загоринский А.А., Ушакова Н.А., Фельдман Т.Б., Островский М.А. Оммохромы сложного глаза насекомых: физикохимические свойства и антиоксидантная активность. Биохимия. 2020. Т. 85. № 6. С. 783–795.
• Островский М.А., Донцов А.Е. Меланосомы глаза позвоночных и оммохромы глаза беспозвоночных как антиоксидантные клеточные органеллы. Известия РАН. Серия биологическая. 2019. № 1. С. 95–108,
• Островский М.А., Зак П.П., Донцов А.Е. Меланосомы глаза позвоночных и оммохромы глаза беспозвоночных как экранирующие клеточные органеллы. Известия РАН. Серия биологическая. 2018. № 6. С. 638–648.
• Butenandt A., Schafer W. Recent Progress in the Chemistry of Natural and Synthetic Coloring Matters and Related Fields. Eds Gore T.S. Acad. Press. NY. USA. 1962. P. 13–34. https://doi.org/10.1177/004051756303300710
• Butenandt A., Schiedt U., Biekert E. Uber Ommochrome, III. Mitteilung: Synthese des Xanthommatins. Eur. JOC. 1954. V. 258 (2). P. 106–116.
• Chiu C.-J., Taylor A. Dietary hyperglycemia, glycemic index and metabolic retinal diseases. Prog. Retin. Eye Res. 2011. V. 30 (1). P. 18–53. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2010.09.001
• Dontsov A., Koromyslova A., Ostrovsky M., Sakina N. Lipofuscins prepared by modification of photoreceptor cells via glycation or lipid peroxidation show the similar phototoxicity. World J. Exp. Med. 2016. V. 6. P. 63–79.
• Dontsov A.E., Fedorovich I.B., Lindstrom M., Ostrovsky M.A. Comparative study of spectral and antioxidant properties of pigments from the eyes of two Mysis relicta populations, with different light damage resistance. J. Comp. Physiol. B. 1999. V. 169. P. 157–164.
• Dontsov A.E., Ostrovsky M.A. Screening Eye Pigments as Natural Antioxidants. Antioxidants in Systems of Varying Complexity: Chemical, Biochemical, and Biological Aspects. Eds Shishkina L.N. et al., CRC Press. Apple Acad. Press Inc. Oakville. Canada; Palm Bay. USA. 2019. P. 141–178.
• Edeas M., Attaf D., Mailfert A.-S., Nasu M., Joubet R. Maillard reaction, mitochondria and oxidative stress: potential role of antioxidants. Pathol. Biol (Paris). 2010. V. 58 (3). P. 220–225. https://doi.org/10.1016/j.patbio.2009.09.011
• Farmer L.A., Haidasz E.A., Griesser M., and Pratt D.A. Phenoxazine: a privileged scaffold for radical-trapping antioxidants. J. Org. Chem. 2017. V. 82. P. 10523–10536. https://doi.org/10.1021/acs.joc.7b02025
• Figon F., Casas J. Ommochromes in invertebrates: biochemistry and cell biology. Biol. Rev. Camb. Philos. Soc. 2019. V. 94. P. 156–183. https://doi.org/10.1111/brv.12441
• Gugliucci A. Formation of fructose-mediated advanced glycation end products and their roles in metabolic and inflammatory diseases. Adv. Nutr. 2017. V. 8. P. 54–62. https://doi.org/10.3945/an.116.013912
• Insausti T.C., LeGall M., and Lazzari C.R. Oxidative stress, photodamage and the role of screening pigments in insect eyes. J. Exp. Biol. 2013. V. 216. P. 3200–3207. https://doi.org/10.1242/jeb.082818
• Langer H. Properties and functions of screening pigments in insect eyes. Photoreceptor optics. Berlin; New York: Springer. 1975. P. 429–455.
• Lapolla A., Traldi P., Fedele D. Importance of measuring products of non-enzymatic glycation of proteins. Clinical Biochem. 2005. V. 38 (2). P. 103–115.
• Linzen B. The tryptophan → ommochrome pathway in insects.I. Advances in insect physiology. Eds Treheme J.E. N.-Y. Acad. Press. 1974. V. 10. P. 117–246.
• Ostrovsky M.A., Sakina N.L., Dontsov A.E. An antioxidative role of ocular screening pigments. Vis.Res. 1987. V. 27. P. 893–899. https://doi.org/10.1016/0042-6989(87)90005-8
• Romero Y., Martinez A. Antiradical capacity of Ommochromes. J. Mol. Model. 2015. V. 21. P. 220. https://doi.org/10.1007/s00894-015-2773-3
• Suarez G., Maturana J., Oronsky A.L., Raventos-Suarez C. Fructose-induced fluorescence generation of reductively methylated glycated bovine serum albumin: evidence for nonenzymatic glycation of Amadori adducts. Biochim. Biophys. Acta. 1991. V. 1075. P. 12–19.
• Uchiki T., Weikel K.A., Jiao W., Shang F., Caceres A., Pawlak D., Handa J.T., Brownlee M., Nagaraj R., Taylor A. Glycation-altered proteolysis as a pathobiological mechanism that links dietary glycemic index, aging, and age-related disease (in nondiabetics). Aging Cell. 2012. V. 11 (1). P. 1–13. https://doi.org/10.1111/j.1474-9726.2011.00752.x
• Ushakova N., Dontsov A., Sakina N., Bastrakov A., Ostrovsky M. Antioxidative properties of melanins and ommochromes from black soldier fly Hermetiaillucens. Biomolecules. 2019. V. 9 (9). P. 408. https://doi.org/10.3390/biom9090408