Том 31 №1

Содержание

1. ВЛИЯНИЕ СЕНСОРНЫХ СВОЙСТВ ПОДКРЕПЛЕНИЯ НА ФОРМИРОВАНИЕ ПИЩЕВОГО ПРЕДПОЧТЕНИЯ У КРЫС
2. РОЛЬ Р38 MAP-КИНАЗЫ В РЕЦЕПЦИИ ИНФРАКРАСНОГО ИЗЛУЧЕНИЯ
3. ИССЛЕДОВАНИЕ ВЛИЯНИЯ ИНГИБИТОРА SRC-КИНАЗЫ PP2 НА СПОСОБНОСТЬ УАБАИНА МОДУЛИРОВАТЬ МЕДЛЕННЫЕ НАТРИЕВЫЕ КАНАЛЫ
4. ПЕРИМЕТРИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ГРАНИЦЫ СЛЕПОЙ ЗОНЫ НА КРАЙНЕЙ ПЕРИФЕРИИ ТЕМПОРАЛЬНОЙ СЕТЧАТКИ
5. LogMAR ДЛЯ ОСТРОТЫ ЗРЕНИЯ ХУЖЕ, ЧЕМ ЛОШАДИНАЯ СИЛА ДЛЯ МОЩНОСТИ ЭЛЕКТРИЧЕСКОЙ ЛАМПОЧКИ
6. РЕАКЦИЯ ЗАМИРАНИЯ ПОД ДЕЙСТВИЕМ ЯРКОГО СВЕТА У АМЕРИКАНСКОГО ТАРАКАНА, PERIPLANETA AMERICANA
7. АНАЛИЗ ДВИЖЕНИЯ ГЛАЗ ЧЕЛОВЕКА ПРИ УПРАВЛЕНИИ САМОХОДНЫМ ШАССИ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ СИСТЕМЫ ВИДЕООКУЛОГРАФИЧЕСКОГО ИНТЕРФЕЙСА
8. МЕХАНИЗМЫ ТРАНСДУКЦИИ ОБОНЯТЕЛЬНЫХ СИГНАЛОВ: ВОЗМОЖНАЯ РОЛЬ СОКРАТИТЕЛЬНОГО АППАРАТА ОБОНЯТЕЛЬНЫХ РЕСНИЧЕК
9. АРХИТЕКТУРА СИСТЕМЫ ДЕТЕКЦИИ И КЛАССИФИКАЦИИ АВТОМОБИЛЕЙ СРЕДСТВАМИ ТЕХНИЧЕСКОГО ЗРЕНИЯ В ЕСТЕСТВЕННЫХ УСЛОВИЯХ
10. ОРИЕНТАЦИЯ В ПРОСТРАНСТВЕ ОСНАЩЕННОГО СТЕРЕОПАРОЙ РОБОТА ПО СТОЛБАМ С ИЗВЕСТНЫМ РАСПОЛОЖЕНИЕМ

Предложена гипотеза, в соответствии с которой в цепи обонятельной трансдукции активация Cl–-каналов осуществляется опосредованно с участием сократительного аппарата обонятельных ресничек. На первом этапе – активация ионами Са2+ структурных элементов миофибрилл обонятельных ресничек обеспечивает сглаживание флуктуаций сигналов обонятельных рецепторов (ОР), G-белков, аденилатциклазы тип III и катионных цАМФ-зависимых каналов. При этом сигнал Са2+-токов переводится интегрально в форму механического напряжения миофибрилл по длине обонятельной реснички. На втором этапе интегральное изменение сокращения миофибрилл через механическое воздействие на сенсорную мембрану обеспечивает активацию Cl–-каналов, сгруппированных в мембране базальной части реснички, непосредственно в зоне развития генераторного потенциала. Обсуждаемый механизм позволяет по-новому оценить роль обонятельных ресничек в процессах трансдукции обонятельных сигналов и на основе интегрирующей функции их сократительного аппарата дать рациональное объяснение таким фундаментальным и взаимно плохо совместимым качествам обонятельной рецепции, как быстродействие, чувствительность и избирательность.

Ключевые слова: обонятельный рецепторный белок, G-белок, цАМФ-зависимые катионные каналы, Са2+-управляемые хлорные каналы, калий–натрий–хлоридный (К+-Na+-2Cl-)-сотранспорт, обонятельные реснички, обонятельная чувствительность, избирательность, быстродействие

Список литературы:

• Бигдай Е.В. Биофизические механизмы обонятельной рецепции // Ж. Эволюционной биохимии и физиологии. 2004 a. Т. 40. No 2. С. 112–117
• Бигдай Е.В. Гетерогенность обонятельной рецепции // Дис. ... д-ра биол. наук. Санкт-Петербург. 2004 б. 264 с.
• Бронштейн А.А. Прижизненные наблюдения над движением волосков обонятельных клеток // Докл. АН СССР. 1962. Т. 142. No .3. С. 715–718
• Бронштейн А.А., Минор А.В. О значении жгутиков и их подвижности для функции обонятельных рецепторов // Докл. АН СССР. 1973. Т. 213. No 4. С. 987–989
• Ганшин В.М., Зинкевич Э.П. Вероятная роль конкурентных отношений в модели обонятельного рецептора // Сенсорные системы. 2012. Т. 26. N 4. C. 331–341
• Гельфанд В.И., Розенблат В.А. Микротрубочки. Их структура, химия и функциональная роль // Итоги науки и техники. Серия “Биологическая химия”. М. ВИНИТИ. 1977. Т. 11. C. 78–143
• Заварзин А.А., Харазова А.Д., Молитвин М.Н. Биология клетки: общая цитология. СПб., Изд-во СПбГУ. 1992. 320 с.
• Каламкаров Г.Р., Островский М.А., Юнусов Р.Р., Шевченко Т.Ф. Молекулярные механизмы взаимодействия белков, участвующих в трансдукции фоторецепторного сигнала // Сенсорные системы. 2004. Т. 18. No 4. С. 275–280
• Минор А.В. Структурная организация периферических отделов обонятельного анализатора и обонятельной луковицы // Физиология сенсорных систем. Часть 2. 1972. С. 515–549
• Минор А.В. О механизме генерации обонятельного рецепторного потенциала // Механизмы работы рецепторных элементов органов чувств. Л.: Наука, 1973. С. 121–126
• Минор А.В., Кайсслинг К-Е. “Темновой” шум в обонятельных клетках насекомого. Оценка частоты спонтанных активаций феромонныx рецепторов // Сенсорные системы. 2000. Т. 20. No 4. С. 325–327
• Огнева И.В. Экспериментальный анализ и моделирование двигательной активности жгутиков обонятельных клеток // Дис. ... канд. физ.-мат. наук. СПб. 2005. 130 c.
• Трущенков В.Г. Характеристики подвижности жгутиков обонятельных нейрорецепторов земноводных // Дис... канд. биол. наук. Владивосток. 1995. 113 с.
• Bhandawat V., Reisert J., Yau K-W. Elementary response of olfactory receptor neurons to odorants // Science. 2005. V. 308. P. 1931–1934.
• Cleveland D.W., Sullivan K.F. Molecular biology and genetics of tubulin // Annu Rev. Biochem. 1985. V. 54. P. 331–365.
• Derksen H.E. Axon membrane voltage uctuations. Acta Physiol. Pharmacol. Neerl. 1965. V.13. P. 373–466.
• Dzeja C., Hagen V., Kaupp U.B., Frings S. Ca2+ permeation in cyclic nucleotide-gated channels // EMBO J. 1999. V.18. P. 131–144.
• Flannery R.J., French D.A., Kleene S.J. Clustering of cyclic nucleotide-gated channels in olfactory cilia // Biophys J. 2006. V. 91. P. 179–188.
• French D.A., Badamdorj D., Kleene S.J. Spatial Distribution of Calcium-Gated Chloride Channels in Olfactory Cilia // PLoS One. 2010. V. 5(12): e15676.
• Haas M., Forbush B. The Na-K-Cl cotransporter of secretory epithelia // Annu. Rev. Physiol. 2000 V. 62. P. 515–534.
• Kaneko H., Putzier I., Frings S., Kaupp U.B., Gensch T. Chloride accumulation in mammalian olfactory sensory neurons // J. Neurosci. 2004. V. 24 P. 7931–7938.
• Kaupp U.B., Seifert R. Cyclic nucleotide-gated ion channels // Physiol. Rev. 2002. V. 82. P. 769–824.
• Kleene S.J. Basal conductance of frog olfactory cilia // P ugers Arch. 1992. V. 421. P. 374–380.
• Kleene S.J. Origin of the chloride current in olfactory transduction // Neuron. 1993. V.11. P. 123–132.
• Kleene S.J. High-gain, low-noise ampli cation in olfactory transduction // Biophys. J. 1997. V.73. P. 1110–1117.
• Kleene S.J. The electrochemical basis of odor transduction in vertebrate olfactory cilia // Chem. Senses. 2008. V.33. P. 839–859.
• Kurahashi T., Yau K-W. Co-existence of cationic and chloride components in odorant-induced current of vertebrate olfactory receptor cells // Nature. 1993. V. 363. P. 71–74.
• Leinders-Zufall T., Rand M.N., Shepherd G.M., Greer C.A., Zufall F. Calcium entry through cyclic nucleotide-gated channels in individual cilia of olfactory receptor cells: spatiotemporal dynamics // J. Neurosci. 1997. V.17. P. 4136–4148.
• Leinders-Zufall T., Greer C.A., Shepherd G.M., Zufall F. I maging odorinduced calcium transients in single olfactory cilia: speci city of activation and role in transduction // J. Neurosci. 1998. V.18. P. 5630–5639.
• Lowe G., Gold G.H. Nonlinear ampli cation by calciumdependent chloride channels in olfactory receptor cells // Nature. 1993. V. 366. P. 283–286.
• Mammen A., Simpson J.P., Nighorn A., Imanishi Y., Palczewski K., Ronnett G.V., Moon C. Hippocalcin in the olfactory epithelium: a mediator of second messenger signaling // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2004. V. 322. P. 1131–1139.
• Matsuzaki O., Bakin R.E, Cai X., Menco B.P.M., Ronnett G.V. Localization of the olfactory cyclic nucleotide-gated channel subunit 1 in normal, embryonic and regenerating olfactory epithelium // Neuroscience. 1999. V. 94. P. 131–140.
• Menco B. Ph.M. Qualitative and quantitative freeze-fracture studies of olfactory and nasal respiratory structures of frog, ox, rat, and dog. I. A general survey // Cell. Tissue. Res. 1980. V. 207. P. 183–209.
• Menco B. Ph.M., Farbman A.I. Ultrastructural evidence for multiple mucous domains in frog olfactory epithelium // Cell. Tissue. Res. 1992. V.270. P. 47–56.
• Menco B. Ph.M., Morrison E.E. Morphology of the mammalian olfactory epithelium: Form, ne structure, function, and pathology // Handbook of olfaction and gustation. 2nd edition. Ed. Doty R.L. New York: Marcel Dekker. 2003. P. 17–49.
• Menini A. Calcium signalling and regulation in olfactory neurons // Curr. Opin. Neurobiol. 1999. V. 9. P. 419–426.
• Mombaerts P. Molecular biology of odorant receptors in vertebrates // Annu. Rev. Physiol. 1999. V. 22. P. 487–509.
• Pace U., Hanski E., Salomon Y., Lancet D. Odorant-sensitive adenylate cyclase may mediate olfactory reception // Nature. 1985. V. 316. P. 255–258.
• Reisert J., Matthews H.R. Response properties of isolated mouse olfactory receptor cells // J. Physiol. 2001 a.V. 530. P. 113–122.
• Reisert J., Matthews H.R. Responses to prolonged odour stimulation in frog olfactory receptor cells // J. Physiol. 2001 b. V. 534. P. 179–191.
• Reisert J., Bauer P.J., Yau K-W., Frings S. The Ca-activated Cl channel and its control in rat olfactory receptor neurons // J. Gen. Physiol. 2003. V.122. P. 349–363.
• Reisert J., Lai J., Yau K.W., Bradley J. Mechanism of the excitatory Cl– response in mouse olfactory receptor neurons // Neuron. 2005. V. 45. P. 553–561.
• Reisert J., Restrepo D. Molecular tuning of odorant receptors and its implication for odor signal processing // Chem. Senses. 2009. V. 34. P. 535–545.
• Reisert J. Origin of basal activity in mammalian olfactory receptor neurons // JGP. 2010. V. 136. No 5. P. 529– 540.
• Reuter D., Zierold K., Schroder W.H., Frings S. A depolarizing chloride current contributes to chemoelectrical transduction in olfactory sensory neurons in situ // J. Neurosci. 1998. V.18. P. 6623–6630.
• Ronnett G.V. Moon C. G-proteins and olfactory signal transduction // Annu. Rev. Physiol. 2002. V.64. P. 189–222.
• Russell J.M. Sodium-potassium-chloride cotransport // Physiol. Rev. 2000. V. 80. P. 211–276.
• Schild D., Restrepo D. Transduction mechanisms in vertebrate olfactory receptor cells // Physiol. Rev. 1998. V. 78. P. 429–466.
• Takeuchi H., Kurahashi T. Distribution, amplification, and summation of cyclic nucleotide sensitivities within single olfactory sensory cilia // J. Neurosci. 2008. V. 28. P. 766–775.
• Zhainazarov A.B., Ache B.W. Odor-induced currents in Xenopus olfactory receptor cells measured with perforated-patch recording // J. Neurophysiol. 1995. V. 74. P. 479–483.
• Uebi T., Miwa N., Kawamura S. Comprehensive interaction of dicalcin with annexins in frog olfactory and respiratory cilia // FEBS J. 2007. V.274. P. 4863–4876.