• 1990 (Том 4)
  • 1989 (Том 3)
  • 1988 (Том 2)
  • 1987 (Том 1)

Том 31 №1

Содержание

  1. ВЛИЯНИЕ СЕНСОРНЫХ СВОЙСТВ ПОДКРЕПЛЕНИЯ НА ФОРМИРОВАНИЕ ПИЩЕВОГО ПРЕДПОЧТЕНИЯ У КРЫС
  2. РОЛЬ Р38 MAP-КИНАЗЫ В РЕЦЕПЦИИ ИНФРАКРАСНОГО ИЗЛУЧЕНИЯ
  3. ИССЛЕДОВАНИЕ ВЛИЯНИЯ ИНГИБИТОРА SRC-КИНАЗЫ PP2 НА СПОСОБНОСТЬ УАБАИНА МОДУЛИРОВАТЬ МЕДЛЕННЫЕ НАТРИЕВЫЕ КАНАЛЫ
  4. ПЕРИМЕТРИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ГРАНИЦЫ СЛЕПОЙ ЗОНЫ НА КРАЙНЕЙ ПЕРИФЕРИИ ТЕМПОРАЛЬНОЙ СЕТЧАТКИ
  5. LogMAR ДЛЯ ОСТРОТЫ ЗРЕНИЯ ХУЖЕ, ЧЕМ ЛОШАДИНАЯ СИЛА ДЛЯ МОЩНОСТИ ЭЛЕКТРИЧЕСКОЙ ЛАМПОЧКИ
  6. РЕАКЦИЯ ЗАМИРАНИЯ ПОД ДЕЙСТВИЕМ ЯРКОГО СВЕТА У АМЕРИКАНСКОГО ТАРАКАНА, PERIPLANETA AMERICANA
  7. АНАЛИЗ ДВИЖЕНИЯ ГЛАЗ ЧЕЛОВЕКА ПРИ УПРАВЛЕНИИ САМОХОДНЫМ ШАССИ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ СИСТЕМЫ ВИДЕООКУЛОГРАФИЧЕСКОГО ИНТЕРФЕЙСА
  8. МЕХАНИЗМЫ ТРАНСДУКЦИИ ОБОНЯТЕЛЬНЫХ СИГНАЛОВ: ВОЗМОЖНАЯ РОЛЬ СОКРАТИТЕЛЬНОГО АППАРАТА ОБОНЯТЕЛЬНЫХ РЕСНИЧЕК
  9. АРХИТЕКТУРА СИСТЕМЫ ДЕТЕКЦИИ И КЛАССИФИКАЦИИ АВТОМОБИЛЕЙ СРЕДСТВАМИ ТЕХНИЧЕСКОГО ЗРЕНИЯ В ЕСТЕСТВЕННЫХ УСЛОВИЯХ
  10. ОРИЕНТАЦИЯ В ПРОСТРАНСТВЕ ОСНАЩЕННОГО СТЕРЕОПАРОЙ РОБОТА ПО СТОЛБАМ С ИЗВЕСТНЫМ РАСПОЛОЖЕНИЕМ

ИССЛЕДОВАНИЕ ВЛИЯНИЯ ИНГИБИТОРА SRC-КИНАЗЫ PP2 НА СПОСОБНОСТЬ УАБАИНА МОДУЛИРОВАТЬ МЕДЛЕННЫЕ НАТРИЕВЫЕ КАНАЛЫ

© 2017 г. Т. Н. Шелых, И. В. Рогачевский, В. Н. Мошкина, С. А. Подзорова, Б. В. Крылов, В. Б. Плахова

Федеральное Государственное бюджетное учреждение науки Институт физиологии им. И.П. Павлова РАН, 199034, Санкт-Петербург, наб. Макарова, д.6
shelt76@mail.ru

Поступила в редакцию 03.08.2016 г.

При помощи метода локальной фиксации потенциала (patch-clamp) было исследовано возможное участие Src-киназы в передаче ноцицептивного сигнала, вызванного взаимодействием уабаина с трансдукторным сайтом Na+, К+-АТФазы. Установлено, что обнаруженный ранее при воздействии низких концентраций уабаина эффект снижения величины эффективного заряда (Ze ) активационной воротной системы каналов NaV1.8, определяющей их потенциалочувствительность, устранялся при предварительном добавлении во внутриклеточный раствор ингибитора Src-киназы PP2. Эти данные впервые доказывают участие Src-киназы в передаче ноцицептивного сигнала на активационное воротное устройство медленных натриевых каналов Na 1.8.

Ключевые слова: ноцицепция, метод локальной фиксации потенциала, медленные натриевые каналы NaV1.8, кардиотонические стероиды, Src- киназа, Na+, К+-АТФаза

Цитирование для раздела "Список литературы": Шелых Т. Н., Рогачевский И. В., Мошкина В. Н., Подзорова С. А., Крылов Б. В., Плахова В. Б. Исследование влияния ингибитора src-киназы pp2 на способность уабаина модулировать медленные натриевые каналы. Сенсорные системы. 2017. Т. 31. № 1. С. 16-21.
Цитирование для раздела "References": Shelykh Т. N., Rogachevsky I. V., Moshkina V. N., Podzorova S. A., Krylov B. V., Plakhova V. B. Issledovanie vliyaniya ingibitora src-kinazy pp2 na sposobnost uabaina modulirovat medlennye natrievye kanaly [Investigation of src-kinase inhibitor pp2 effects on modulation of slow sodium channels by ouabain]. Sensornye sistemy [Sensory systems]. 2017. V. 31(1). P. 16-21 (in Russian).

Список литературы:

  • Плахова В.Б., Подзорова С.А., Мищенко И.В., Баграев Н.Т., Клячкин Л.Е., Маляренко А.М., Романов В.В., Кры- лов Б.В. Возможные механизмы действия инфра- красного излучения на мембрану сенсорного нейро- на // Сенсорные системы. 2003. Т. 17. No 1. С. 24– 31
  • Almers W. Gating currents and charge movements in excitable membranes // Rev. Physiol. Biochem. Pharmacol. 1978. V. 82. P. 97–190.
  • Borovikova L., Borovikov D., Ermishkin V., Revenko S. The resistance of cutaneous feline C- ber mechano-heat- sensitive unit termination to tetrodotoxin and its possible relation to tetrodotoxin-resistant sodium channels // Primary Sensory Neuron. 1997. V. 2. N 1. P. 65–75.
  • Cardenas C.G., Del Mar L.P., Cooper B.Y., Scroggs R.S. 5HT4 receptors couple positively to tetrodotoxin-insensitive sodium channels in a subpopulation of capsaicin-sensitive rat sensory neurons // J. Neuroscience. 1997. V. 17. N 19. P. 7181–7189.
  • Elliott A.A., Elliott J.R. Characterization of TTX-sensitive and TTX-resistant sodium currents in small cells from adult rat dorsal root ganglia // J. Physiol. (Lond.) 1993. V. 463. N 4. P. 39–56.
  • Hamill O.P., Marty A., Neher E., Sakmann B., Sigworth F. Improved patch-clamp techniques for high-resolution current recording from cells and cell-free membrane patches // P ügers Arch. 1981. V. 391. N 1. P. 85–100.
  • Hanke J.H., Gardner J.P., Dow R.L., Changelian P.S., Brissette W.H., Weringer E.J., Pollok B.A., Connelly P.A. Discovery of a novel, potent, and Src family-selective tyrosine kinase inhibitor. Study of Lck- and FynT-dependent T cell activation // J. Biol Chem. 1996. V. 271. N 2. P. 695–701.
  • Hodgkin A.L., Huxley A.F. Currents carried by sodium and potassium ions through the membrane of the giant axon of Loligo // J. Physiol. 1952a. V. 116. N 4. P. 449–472.
  • Hodgkin A.L., Huxley A.F. The dual effect of membrane potential on sodium conductance in the giant axon of Loligo // J. Physiol. 1952b. V. 116. N 4. P. 497–506.
  • Hodgkin A.L., Huxley A.F. A quantitative description of membrane current and its application to conduction and excitation in nerve // J. Physiol. 1952c. V. 117. N 4. P. 500–544.
  • Kostyuk P.G., Krishtal O.A., Pidoplichko V.I. Effect of internal uoride and phosphate on membrane currents during intracellular dialysis of nerve cells // Nature. 1975. V. 257. N 5528. P. 691–693.
  • Krylov B., Derbenev A., Podzorova S., Lyudyno M., Kuz‘min A., Izvarina N. Morphine decreases the voltage sensitivity of slow sodium channels // Neurosci. Behav. Physiol. 2000. V. 30. N 4. P. 431–439.
  • Liang M., Tian J., Liu L., Pierre S., Liu J., Shapiro J., Xie Z.J. Identi cation of a pool of non-pumping Na+, К+- АТPase // J. Biol. Chem. 2007. V. 282. N 14. P. 10585–10593.
  • Lopatina E.V., Yachnev I.L., Penniyaynen V.A., Plakhova V.B., Podzorova S.A., Shelykh T.N., Rogachevsky I.V., Butkevich I.P., Mikhailenko V.A., Kipenko A.V., Krylov B.V. Modulation of signal-transducing function of neuronal membrane Na+, К+-АТPase by endogenous ouabain and low-power infrared radiation leads to pain relief // Medicinal Chemistry. 2012. V. 8. N 1. P. 33–39.
  • Rogachevskii I.V., Shelykh T.N., Podzorova S.A., Krylov B.V., Plakhova V.B. Ab initio conformational analysis of marinobufagenin molecule and molecular targets of the action of cardiotonic steroids // Russian Journal of Organic Chemistry. 2015. V. 51. N 11. P. 1620–1626.
  • Thomas S.M., Brugge J.S. Cellular functions regulated by Src family kinases // Annu. Rev. Cell. Dev. Biol. 1997. V. 13. P. 513–609.
  • Xie Z., Askari A. Na+, К+-АТPase as a signal transducer // Eur. J. Biochem. 2002. V. 269. N 10. P. 2434–2439.
  • Yachnev I.L., Plakhova V.B., Podzorova S.A., Shelykh T.N., Rogachevsky I.V., Krylov B.V. Mechanism of pain relief by low-power infrared irradiation: ATP is an IR-target molecule in nociceptive neurons // Medicinal Chemistry. 2012. V. 8. N 1. P. 14–21.
  • Yachnev I.L., Shelykh T.N., Podzorova S.A., Rogachevskii I.V., Krylov B.V., Plakhova V.B. Possible molecular effect related to the reception of low-intensity IR radiation: role of Src- kinase // Technical Physics. 2016. V. 61. N 6. P. 929–933.
  • Zhang S.B., Malmersjo S., Li J., Ando H., Aizman O., Uhlen P., Mikoshiba K., Aperia A. Distinct role of the N-terminal tail of the Na+, К+-АТPase catalytic subunit as a signal transducter // J. Biol. Chem. 2006. V. 281. N 31. P. 21954–21962.