• 2026 (Том 40)
  • 1990 (Том 4)
  • 1989 (Том 3)
  • 1988 (Том 2)
  • 1987 (Том 1)

Том 40 №1

Содержание

  1. Нейрональная активность височной коры неанестезированной кошки, синхронизированная с дыхательным ритмом
  2. Поведенческие реакции кукурузного мотылька на ультразвуковые сигналы в лабораторных и полевых условиях
  3. Временные пороги локализации движущихся звуковых образов у пациентов с хронической сенсоневральной тугоухостью и центральными слуховыми расстройствами
  4. Факторы апперцепции при обнаружении речевого сигнала на фоне пространственно распределенного шума многоголосия
  5. О влиянии глицина на обонятельную чувствительность крыс линии Вистар, опосредованном возбуждающим глициновым рецептором
  6. Двухканальный механизм кодирования ориентаций в зрительной системе

О влиянии глицина на обонятельную чувствительность крыс линии Вистар, опосредованном возбуждающим глициновым рецептором

© 2026 г. А.А. Зуйкова, Е.В. Бигдай, А.В. Поздняков

Федеральное государственное образовательное учреждение высшего образования «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Санкт-Петербург, Российская Федерация
a-zuykova@mail.ru

Поступила в редакцию 10.01.2025 г.

Возбуждающий глициновый рецептор (eGlyR) выполняет нейропротекторную функцию в нейронах центральной нервной системы. Показано, что eGlyR локализуется в апикальных областях обонятельных сенсорных нейронов (ОСН). Основным его отличием является способность активироваться только молекулами глицина, а также малая проницаемость для ионов кальция. Однако функциональная роль этого рецептора в обонятельных рецепторных клетках изучена недостаточно. Поэтому целью данного исследования было изучить, влияет ли глицин на обонятельную чувствительность ОСН. Для достижения этой цели мы с помощью прижизненной кальциевой флуоресцентной микроскопии регистрировали изменения флуоресценции в ответ на действие в присутствии глицина и без него. Полученные данные позволяют утверждать, что глицин влияет на обонятельную чувствительность ОСН. При этом реакции рецепторных клеток изменялись по-разному, в одних – усиливаясь, а в других – ослабевая, вплоть до полного исчезновения. Вероятно, такие реакции обусловлены различной чувствительностью обонятельных сенсорных нейронов к запахам. Таким образом, глицин через активацию возбуждающего глицинового рецептора может влиять на обонятельную чувствительность сенсорных нейронов.

Ключевые слова: возбуждающий глициновый рецептор, GluN3A субъединица, обонятельные сенсорные нейроны, глицин

DOI: 10.7868/S3034593626010059

Цитирование для раздела "Список литературы": Зуйкова А. А., Бигдай Е. В., Поздняков А. В. О влиянии глицина на обонятельную чувствительность крыс линии вистар, опосредованном возбуждающим глициновым рецептором. Сенсорные системы. 2026. Т. 40. № 1. С. 59–71. doi: 10.7868/S3034593626010059
Цитирование для раздела "References": Zuykova A. A., Bigdai E. V., Pozdnyakov A. V. O vliyanii glitsina na obonyatelnuyu chuvstvitelnost krys linii vistar, oposredovannom vozbuzhdayushchim glitsinovym retseptorom [The effect of glycine on olfactory sensitivity in wistar rats mediated by an excitatory glycine receptor]. Sensornye sistemy [Sensory systems]. 2026. V. 40(1). P. 59–71 (in Russian). doi: 10.7868/S3034593626010059

Список литературы:

  • Бигдай Е.В., Разинова А.А. Роль цАМФ в топографической организации обонятельной системы. Журнал эволюционной биохимии и физиологии. 2023. Т. 59(5). C. 345–360. https://doi.org/10.31857/S0044452923050030
  • Бигдай Е.В., Самойлов В.О. Влияние нейротрансмиттеров на функционирование обонятельных сенсорных нейронов. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2022. T. 108(6). С. 699–711. https://doi.org/10.31857/S0869813922060012
  • Быстрова М.Ф., Колесников С.С. Правило «один нейрон – один рецептор» в физиологии и генетике обоняния. Успехи физиологических наук. 2020. Т. 51. С. 3–15. https://doi.org/10.31857/S0301179820030042
  • Панов С.А., Бигдай Е.В., Дудич Б.А., Самойлов В.О. Участие тубулин-динеиновой молекулярной системы в двигательной активности обонятельных жгутиков. Вестник Военно-медицинской академии. 2013. Т. 3(43). С. 130–134.
  • Рыбникова А.В., Макарова М.Н. Методы эвтаназии лабораторных животных в соответствии с Европейской директивой 2010/63. Международный вестник ветеринарии. 2015. Т. 2. С. 96.
  • Сергеев А. В., Мыцик А. В., Акулинин В. А., Степанов С. С., Горбачева С. М. Современные проблемы морфологического изучения цитоархитектоники коры большого мозга человека в норме и при ишемии. Вестник новых медицинских технологий. Электронное издание. 2014. №1. uRL: https://cyberleninka. ru/article/n/sovremennye-problemy-morfologicheskogo-izucheniya-tsitoarhitektoniki-kory-bolshogo-mozgacheloveka-v-norme-i-pri-ishemii (дата обращения: 21.01.2026).
  • Antunes G., Sebastião A.M., Simoes de Souza F.M. Mechanisms of regulation of olfactory transduction and adaptation in the olfactory cilium. PLoS One. 2014. V. 9(8). Article e105531. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0105531
  • Bigdai E.V., Samoilov V.O. Components of the intracellular cAMP system supporting the olfactory reception of amyl alcohol. Neurosci Behav Physiol. 2003. V. 33(1). P. 89–94. https://doi.org/10.1023/a:1021139617470
  • Bigday E.V., Zuykova A.A., Barmasova A.M., Razinova A.A., Pozdnyakov A.V., Ivanov D.O. GluN3A Subunit Forms GluN3A-NMDAR and the Excitatory Glycine Receptor in Olfactory Sensory Neurons of Adult Rats. J Evol Biochem Phys. 2025. V. 61. P. 561–572. https://doi.org/10.31857/S0869813925050096
  • Bossi S., Dhanasobhon D., Ellis-Davies GCR., Frontera J., de Brito Van Velze M., Lourenço J., Murillo A., Luján R., Casado M., Perez-Otaño I., Bacci A., Popa D., Paoletti P., Rebola N. GluN3A excitatory glycine receptors control adult cortical and amygdalar circuits. Neuron. 2022. V. 110(15). P. 2438–2454.e8. https://doi.org/10.1016/j.neuron.2022.05.016
  • Bossi S., Pizzamiglio L., Paoletti P. Excitatory GluN1/GluN3A glycine receptors (eGlyRs) in brain signaling. Trends Neurosci. 2023. V. 46(8). P. 667–681. https://doi.org/10.1016/j.tins.2023.05.002
  • Bryche B., Baly C., Meunier N. Modulation of olfactory signal detection in the olfactory epithelium: focus on the internal and external environment, and the emerging role of the immune system. Cell Tissue Res. 2021. V. 384(3). P. 589–605. https://doi.org/10.1007/s00441-021-03467-y
  • Carr V.M., Farbman A.I. The dynamics of cell death in the olfactory epithelium. Exp Neurol. 1993. V. 124(2). P. 308–314. https://doi.org/10.1006/exnr.1993.1201
  • Challis R.C., Tian H., Wang J., He J., Jiang J., Chen x., Yin W., Connelly T., Ma L., Yu C.R., Pluznick J.L., Storm D.R., Huang L., Zhao K., Ma M. An Olfactory Cilia Pattern in the Mammalian Nose Ensures High Sensitivity to Odors. Curr Biol. 2015. V. 25(19). P. 2503–12. https://doi.org/10.1016/j.cub.2015.07.065
  • Chatterton J.E., Awobuluyi M., Premkumar L.S., Takahashi H., Talantova M., Shin Y., Cui J., Tu S., Sevarino K.A., Nakanishi N., Tong G., Lipton S.A., Zhang D. Excitatory glycine receptors containing the NR3 family of NMDA receptor subunits. Nature. 2002. V. 415(6873). P. 793–8. https://doi.org/10.1038/nature715
  • Choi E.J., xia Z., Storm D.R. Stimulation of the type III olfactory adenylyl cyclase by calcium and calmodulin. Biochemistry. 1992. V. 31(28). P. 6492-8. https://doi.org/ 10.1021/bi00143a019
  • Cooper DM. Regulation and organization of adenylyl cyclases and cAMP. Biochem J. 2003. V. 375(Pt 3). P. 517-529. https://doi.org/10.1042/BJ20031061
  • Cunningham A.M., Manis P.B., Reed R.R., Ronnett G.V. Olfactory receptor neurons exist as distinct subclasses of immature and mature cells in primary culture. Neuroscience. 1999. V. 93(4). P. 1301–1312. https://doi.org/10.1016/s0306-4522(99)00193-1
  • Dong x., Wang Y., Qin Zh. Molecular mechanisms of excitotoxicity and their relevance to pathogenesis of neurodegenerative diseases. Acta Pharmacol Sin. 2009. V. 30(4). P. 379–387. https://doi.org/10.1038/aps.2009.24
  • Elsaesser R., Paysan J. The sense of smell, its signalling pathways, and the dichotomy of cilia and microvilli in olfactory sensory cells. BMC Neurosci. 2007. V. 18(8, Suppl 3). P. S1. https://doi.org/10.1186/1471-2202-8-S3-S1
  • Frings S. Protein kinase C sensitizes olfactory adenylate cyclase. J Gen Physiol. 1993. V. 101(2). P.183–205. https://doi.org/10.1085/jgp.101.2.183
  • Genovese F., Reisert J., Kefalov V.J. Sensory Transduction in Photoreceptors and Olfactory Sensory Neurons: Common Features and Distinct Characteristics. Front Cell Neurosci. 2021. V. 15. P. 761416. https://doi.org/10.3389/fncel.2021.761416
  • Grand T., Abi Gerges S., David M., Diana M.A., Paoletti P. unmasking GluN1/GluN3A excitatory glycine NMDA receptors. Nat Commun. 2018. V. 9(1). P. 4769. https://doi.org/10.1038/s41467-018-07236-4
  • Heron P.M., Stromberg A.J., Breheny P., McClintock T.S. Molecular events in the cell types of the olfactory epithelium during adult neurogenesis. Mol Brain. 2013. V. 6. P. 49. https://doi.org/10.1186/1756-6606-6-49
  • Huang J.S., Kunkhyen T., Rangel A.N., Brechbill T.R., Gregory J.D., Winson-Bushby E.D., Liu B., Avon J.T., Muggleton R.J., Cheetham C.EJ. Immature olfactory sensory neurons provide behaviorally relevant sensory input to the olfactory bulb. Nat Commun. 2022. V. 13(1). P. 6194. https://doi.org/10.1038/s41467-022-33967-6
  • Hurley E.P., Mukherjee B., Fang L.Z., Barnes J.R., Barron J.C., Nafar F., Hirasawa M., Parsons M.P. GluN3A and Excitatory Glycine Receptors in the Adult Hippocampus. J Neurosci. 2024. V. 44(42). P. e0401242024. https://doi.org/10.1523/JNEuROSCI.0401-24.2024
  • Kehoe L.A., Bernardinelli Y., Muller D. GluN3A: an NMDA receptor subunit with exquisite properties and functions. Neural Plast. 2013. 2013. Article 145387. https://doi.org/10.1155/2013/145387
  • Kelsom C., Lu W. Development and specification of GABAergic cortical interneurons. Cell Biosci. 2013. V. 3(1). P. 19. https://doi.org/10.1186/2045-3701-3-19
  • Lavoie J., Sawa A., Ishizuka K. Application of olfactory tissue and its neural progenitors to schizophrenia and psychiatric research. Curr Opin Psychiatry. 2017. V. 30(3). P. 176–183. https://doi.org/10.1097/YCO.0000000000000327
  • Lee J.H., Wei Z.Z., Chen D., Gu x., Wei L., Yu S.P. A neuroprotective role of the NMDA receptor subunit GluN3A (NR3A) in ischemic stroke of the adult mouse. Am J Physiol Cell Physiol. 2015. V. 308(7). P. 570-7. https://doi.org/10.1152/ajpcell.00353.2014
  • Lee J.H., Wei L., Deveau T.C., Gu x., Yu S.P. Expression of the NMDA receptor subunit GluN3A (NR3A) in the olfactory system and its regulatory role on olfaction in the adult mouse. Brain Struct Funct. 2016. V. 221(6). P. 3259–73. https://doi.org/10.1007/s00429-015-1099-3
  • Otsu Y., Darcq E., Pietrajtis K., Mátyás F., Schwartz E., Bessaih T., Abi Gerges S., Rousseau C.V., Grand T., Dieudonné S., Paoletti P., Acsády L., Agulhon C., Kieffer B.L., Diana M.A. Control of aversion by glycine-gated GluN1/GluN3A NMDA receptors in the adult medial habenula. Science. 2019. 366(6462):250–254. https://doi.org/10.1126/science.aax1522
  • Rawson N.E., Gomez G., Cowart B., Brand J.G., Lowry L.D., Pribitkin E.A., Restrepo D. Selectivity and response characteristics of human olfactory neurons. J Neurophysiol. 1997. V. 77(3). P. 1606–13. https://doi.org/10.1152/jn.1997.77.3.1606
  • Reisert J., Restrepo D. Molecular tuning of odorant receptors and its implication for odor signal processing. Chem Senses. 2009. V. 34(7). P. 535–45. https://doi.org/10.1093/chemse/bjp028
  • Su C.Y., Menuz K., Carlson J.R. Olfactory perception: receptors, cells, and circuits. Cell. 2009. V. 139(1). P. 45–59. https://doi.org/10.1016/j.cell.2009.09.015
  • Su K., Bourdette D., Forte M. Mitochondrial dysfunction and neurodegeneration in multiple sclerosis. Front Physiol. 2013. V. 4. P. 169. https://doi.org/10.3389/fphys.2013.00169
  • Szydlowska K., Tymianski M. Calcium, ischemia and excitotoxicity. Cell Calcium. 2010. V. 47(2). P. 122–9. https://doi.org/10.1016/j.ceca.2010.01.003
  • Turner S.L, Ray A. Modification of CO2 avoidance behavior in Drosophila by inhibitory odorants. Nature. 2009. V. 461(7261). P. 277–81. https://doi.org/10.1038/nature08295
  • Vassar R., Ngai J., Axel R. Spatial segregation of odorant receptor expression in the mammalian olfactory epithelium. Cell. 1993. V. 74(2). P. 309–18. https://doi.org/10.1016/0092-8674(93)90422-m