Том 29 №1

Содержание

  1. К ВОПРОСУ О ВЗАИМНОЙ КОРРЕЛЯЦИИ ИМПУЛЬСНОЙ АКТИВНОСТИ НЕЙРОНОВ СЛУХОВОГО ПУТИ (АНАЛИТИЧЕСКИЙ ОБЗОР)
  2. ОРГАНИЗАЦИЯ ДИРЕКЦИОНАЛЬНОЙ ИЗБИРАТЕЛЬНОСТИ ГАНГЛИОЗНЫХ КЛЕТОК СЕТЧАТКИ. ОБЗОР
  3. РАСПОЗНАВАНИЕ ПРОЕКТИВНО ПРЕОБРАЗОВАННЫХ ПЛОСКИХ ФИГУР. VIII. О ВЫЧИСЛЕНИИ АНСАМБЛЯ РОТАЦИОННОЙ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ ОВАЛОВ С СИММЕТРИЕЙ ВРАЩЕНИЯ
  4. РАЗЛИЧИЯ МЕТАБОЛИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ В ГЛАЗОСПЕЦИФИЧНЫХ СЛОЯХ ДОРСАЛЬНОГО ЯДРА НАРУЖНОГО КОЛЕНЧАТОГО ТЕЛА КОШЕК ПРИ НАРУШЕНИИ БИНОКУЛЯРНОГО ЗРЕНИЯ
  5. ВЛИЯНИЕ МАСКИРОВКИ НА ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ СЛУХА К ДИНАМИЧЕСКИМ ИЗМЕНЕНИЯМ СПЕКТРАЛЬНОГО РИСУНКА ЗВУКОВОГО СИГНАЛА В ЗАВИСИМОСТИ ОТ ОТНОШЕНИЯ ИНТЕНСИВНОСТЕЙ МАСКЕРА И СИГНАЛА
  6. ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ РАЗЛИЧНЫХ УЧАСТКОВ ГОЛОВЫ КИТА БЕЛУХИ К АКУСТИЧЕСКИМ СТИМУЛАМ: ПРОВЕРКА ГИПОТЕЗ ЗВУКОПРОВЕДЕНИЯ У КИТООБРАЗНЫХ
  7. БИОСЕНСОРНАЯ ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ФИЗИОЛОГИЧЕСКИХ КОНЦЕНТРАЦИЙ ГЕПАРИНА

РАЗЛИЧИЯ МЕТАБОЛИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ В ГЛАЗОСПЕЦИФИЧНЫХ СЛОЯХ ДОРСАЛЬНОГО ЯДРА НАРУЖНОГО КОЛЕНЧАТОГО ТЕЛА КОШЕК ПРИ НАРУШЕНИИ БИНОКУЛЯРНОГО ЗРЕНИЯ

© 2015 г. П. Ю. Шкорбатова, С.Н. Топорова, С. В. Алексеенко

ФГБУН Институт физиологии им. И.П. Павлова РАН 199034, Санкт-Петербург, наб. Макарова, 6
polinavet@yandex.ru

Поступила в редакцию 14.08.2014 г.

С целью изучения изменений в зрительных подкорковых структурах при ранних нарушениях бинокулярного зрения оценивали функциональную активность нейронов в дорсальном ядре наружного коленчатого тела (НКТд) у взрослых монокулярно депривированных кошек и кошек с косоглазием, вызванным тенотомией глазных мышц. Использовали гистохимический метод выявления цитохромоксидазы (ЦО) – митохондриального фермента дыхательной цепи, уровень активности которого коррелирует с функциональной активностью клеток. На изображениях окрашенных срезов ядра измеряли оптическую плотность в глазоспецифичных слоях А и А1 в зоне проекции центральных пяти угловых градусов поля зрения и вычисляли контраст (К) между значениями оптической плотности в этих слоях. У монокулярно депривированных кошек значение контраста в полушарии, контралатеральном депривированному глазу, было отрицательным, а в полушарии, ипсилатеральном депривированному глазу, – положительным. Подобные межполушарные различия в значениях К наблюдались у кошек с унилатеральным (конвергентным и дивергентным) косоглазием, а также у кошек с билатеральным косоглазием. При этом модуль значений К у кошек с нарушениями бинокулярного зрения был достоверно больше, чем у интактных кошек, у которых отличие К от нуля определялось доминированием одного глаза. Предполагается, что выявленные различия в оптической плотности слоев А и А1 НКТд обусловлены снижением функциональной активности нейронов, получающих входы из депривированного или косящего глаза. Подобные различия, наблюдаемые при билатеральном косоглазии, также предполагают снижение активности одного из глаз у таких животных.

Ключевые слова: кошка, наружное коленчатое тело, косоглазие, монокулярная депривация, цито-хромоксидаза

Цитирование для раздела "Список литературы": Шкорбатова П. Ю., Топорова С. Н., Алексеенко С. В. Различия метаболической активности в глазоспецифичных слоях дорсального ядра наружного коленчатого тела кошек при нарушении бинокулярного зрения. Сенсорные системы. 2015. Т. 29. № 1. С. 56-62.
Цитирование для раздела "References": Shkorbatova P. Yu., Toporova S. N., Alekseenko S. V. Razlichiya metabolicheskoi aktivnosti v glazospetsifichnykh sloyakh dorsalnogo yadra naruzhnogo kolenchatogo tela koshek pri narushenii binokulyarnogo zreniya [The differences in the neuronal metabolic activity in eye-specific layers of the dorsal lateral geniculate nucleus in cats with altered binocular vision]. Sensornye sistemy [Sensory systems]. 2015. V. 29(1). P. 56-62 (in Russian).

Список литературы:

  • Алексеенко С.В., Шкорбатова П.Ю., Топорова С.Н., Солнушкин С.Д. Влияние косоглазия и монокулярной депривации на структуру межполушарных связей в проекционных зрительных полях коры кошки // Сенсорные системы. 2012. Т. 26. No 2. С. 106–116.
  • Меркульева Н.С., Макаров Ф.Н. Особенности активности цитохромоксидазы нейронов зрительной системы котят, выросших в условиях мелькающего освещения // Морфология. 2004. Т. 126. No 5. С. 20–23.
  • Рычкова С.И., Васильева Н.Н. Взаимоотношение монокулярных и бинокулярных механизмов пространственного восприятия при разных видах амблиопии // Сенсорные системы. 2011. Т. 25. No 3. С. 119–130.
  • Хватова К.В., Слышалова Н.Н., Вакурина А.Е. Амблиопия: зрительные функции, патогенез и принципы лечения // Зрительные функции и их коррекция у детей / Под ред. Аветисова С.Э., Кащенко Т.П., Шамшиновой А.М. М.: Медицина. 2005. С. 202– 220.
  • Чихман В.Н., Солнушкин С.Д., Алексеенко С.В. Компьютерный анализ изображений срезов зрительной коры мозга // Тр. 7-го Междунар. междисциплинарного конгр. “Нейронаука для медицины и психологии” / Под ред. Е.В. Лосевой, Н.А. Логиновой. М.: МАКС Пресс, 2011. С. 454.
  • Carr P.A., Yamamoto T., Staines W.A., Whittaker M.E., Nagy J.I. Quantitative histochemical analysis of cytochrome oxidase in rat dorsal root ganglia and its colocalization with carbonic anhydrase // Neuroscience. 1989. V. 33. No 2. P. 351–362.
  • Conway B.R., Boyd J.D., Stewart T.H., Matsubara J.A. The projection from V1 to extrastriate area 21a: a second patchy efferent pathway that colocalizes with the CO blob columns in cat visual cortex // Cerebral Cortex. 2000. V. 10. No 2. P. 149–159.
  • Daw N.W. Visual development. New York: Springer, 2006. 268 p.
  • Dyck R.H., Cynader M.S. An interdigitated columnar mosaic of cytochrome oxidase, zinc, and neurotransmitterrelated molecules in cat and monkey visual cortex // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. V. 90. No 19. P. 9066– 9069.
  • Garraghty P.E., Besheer J.,Salinger W.L. Cell size in the lateral geniculate nucleus of cats reared with esotropia and sagittal transection of the optic chiasm // Brain Res Dev Brain Res. 1997. V 100 No 1. P. 127–129.
  • Gonzalez-Lima F., Cada A. Quantitative histochemistry of cytochrome oxidase activity // Сytochrome oxidase in neuronal metabolism and Alzheimer’s disease / Ed. F. Gonzalez-Lima. New York: Plenum Press, 1998. P. 55–90.
  • Guillery R.W., Stelzner D.J. The differential effects of unilateral lid closure upon the monocular and binocular segments of the dorsal lateral geniculate nucleus in the cat // J. Comp. Neurol. 1970. V. 139. No 4. P. 413–421.
  • Hevner R.F., Wong-Riley M.T. Regulation of cytochrome oxidase protein levels by functional activity in the macaque monkey visual system // J. Neurosci. 1990. V. 10. No 4. P. 1331–1340.
  • Horton J.C., Hocking D.R. Effect of early monocular enucleation upon ocular dominance columns and cytochrome oxidase activity in monkey and human visual cortex // Vis. Neurosci. 1998. V. 15. No 2. P. 289– 303.
  • Hubel D.H., Wiesel T.N. Brain and visual perception. New York.: Oxford Univ. Press, 2005. 744 p.
  • Ikeda H., Plant G.T., Tremain K.E. Nasal field loss in kittens reared with convergent squint: neurophysiological and morphological studies of the lateral geniculate nucleus // J. Physiol. 1977. V. 270. No 2. P. 345–366.
  • Jones K.R., Kalil R.E., Spear P.D. Effects of strabismus on responsivity, spatial resolution, and contrast sensitivity of cat lateral geniculate neurons // J. Neurophysiol. 1984. V. 52. P. 538–552.
  • Kalil R.E., Spear P. D., Langsetmo A. Response properties of striate cortex neurons in cats raised with divergent or convergent strabismus // J. Neurophysiol. 1984. V. 52. P. 514–537.
  • Kiorpes L., Kiper D.C., O’Keefe L.P., Cavanaugh J.R., Movshon J.A. Neuronal сorrelates of amblyopia in the visual cortex of macaque monkeys with experimental strabismus and anisometropia // J. Neurosci. 1998. V. 18. No 16. P. 6411–6424.
  • Murphy K.M., Jones D.G., Van Sluyters R.C. Cytochromeoxidase blobs in сat primary visual cortex // J. Neurosci. 1995. V. 15. No 6. P. 4196–4208.
  • Murphy K.M., Duffy K.R., Jones D.G., Mitchell D.E. Development of cytochrome oxidase blobs in visual cortex of normal and visually deprived cats // Cereb. Cortex. 2001. V. 11. No 2. P. 122–135.
  • Muckli L., Kiess S., Tonhausen N., Singer W., Goebel R., Sireteanu R. Cerebral correlates of impaired grating perception in individual, psychophysically assessed human amblyopes // Vision Res. 2006. V. 46. No 4. P. 506–526.
  • Payne B.R., Lomber S.G. Age dependent modification of cytochrome oxidase activity in the cat dorsal lateral geniculate nucleus following removal of primary visual cortex // Vis. Neurosci. 1996. V. 13. No 5. P. 805–816.
  • Sanderson K.J. The projection of the visual field to the lateral geniculate and medial interlaminar nuclei in the cat // J. Comp. Neurol. 1971. V. 143. No 1. P. 101–108.
  • Sasaki Y., Cheng H., Smith E.L., III, Chino Y. Effects of early discordant binocular vision on the postnatal development of parvocellular neurons in the monkey lateral geniculate nucleus // Exp. Brain Res. 1998. V. 118. No 3. P. 341–351.
  • Sengpiel F., Blakemore C. The neural basis of suppression and amblyopia in strabismus // Eye (Lond). 1996. V. 10. No 2. P. 250–258.
  • Sherman S.M., Hoffmann K. P., Stone J. Loss of a specific cell type from dorsal lateral geniculate nucleus in visually deprived cats // J. Neurophysiol. 1972. V. 35. No 4. P. 532–541.
  • Sireteanu R., Fronius M., Singer W. Binocular interaction in the peripheral visual field of humans with strabismic and anisometropic amblyopia // Vision Res. 1981. V. 21. No 7. P. 1065–1074.
  • Sloper J.J., Headon M.P., Powell T.P. Changes in the size of cells in the monocular segment of the primate lateral geniculate nucleus during normal development and following visual deprivation // Brain Res. 1987. V. 528, No 2. P. 267–276.
  • Von Noorden G.K., Crawford M. L., Middle-Ditch P.R. The effects of monocular visual deprivation: disuse or binocular interaction // Brain Res. 1976. V. 111. No 2. P. 277–285.
  • Von Noorden G.K., Crawford M.L. The lateral geniculate nucleus in human strabismic amblyopia // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1992. V. 33. No 9. P. 2729–2732.
  • Von Noorden G.K., Middleditch P.R. Histology of the monkey lateral geniculate nucleus after unilateral lid closure and experimental strabismus: further observations // Invest Ophthalmol. 1975. V. 14. No 9. P. 674– 683.
  • Webber A.L., Wood J. Amblyopia: prevalence, natural history, functional effects and treatment // Clinical and Experimental Optometry. 2005. V. 88. No 6. P. 365– 375.
  • Wiesel T.N., Hubel D.H. Single-cell responses in striate cortex of kittens deprived of vision in one eye // J. Neurophysiol. 1963. V. 26. P. 1003–1017.
  • Wong-Riley M. Changes in the visual system of monocularly sutured or enucleated cats demonstrable with cytochrome oxidase histochemistry // Brain Res. 1979. V. 171, No 1. P. 11–28.
  • Wong-Riley M., Riley D.A. The effect of impulse blockade on cytochrome oxidase activity in the cat visual system // Brain. Res. 1983. V. 261. No 2. P. 185–193.